EXTRACTES VEGETALS - materials i mètodes
Algues
Cultiu
S'utilitza l’alga Dunaliella salina, procedent de l’Institut d’Estudis Professionals Aqüícoles i Ambientals de Catalunya (IEPAAC), ubicat a Sant Carles de la Ràpita. La seva propagació es du a terme en un matràs Erlenmeyer per a cultius cel·lulars d'1 L i un cop ajustades les condicions de salinitat s'escala a un matràs de 2 L.
Condicions
Per l’escalat al laboratori, s'utilitzen diferents concentracions de sal per a veure quines són les condicions salines més adients pel seu creixement. Atenent a la salinitat i nutrients necessaris pel seu creixement [1][2][3], inicialment es cultiva la D. salina amb diferents concentracions de sal (100 g/L (1,7 M), 120 g/L (2 M), 150 g/L (2,6 M)) i amb una solució Goldmedium a 0,2 M en nitrats.
Els diferents cultius s'inicien en 3 matrassos d’1 L, inoculant 10 ml d’un cultiu mare del IEPAAC en 300 ml d’aigua de mar filtrada (filtre de 0,65 µm) amb Golmedium en proporció 1:10. Els cultius es mantenen constantment en agitació emprant un compressor amb aire filtrat a 0,22 µm a temperatura no controlada (20 ºC ± 3) i amb un fotoperíode 12:12. Durant aproximadament un mes, un parell de cops a la setmana es mesura la seva densitat òptica (DO) per així controlar quin dels cultius presenta major creixement. També es monotoritza el pH mitjançant una sonda mòbil, obtenint valors entre 6,8 i 7,8.
Mesura del creixement
El creixement del cultiu es monitoritza mitjançant dos paràmetres diferents [4][5]:
-
Densitat òptica (D.O.) - mitjançant un espectrofotòmetre de llum visible a uns valors d'absorbància de 600 nm. S’utilitza com a blanc aigua destil·lada i les mesures es realitzen amb mostra del cultiu sense diluir en cubetes de plàstic.
-
Comptatge cel·lular - mitjançant un hemocitòmetre (càmera de Neubauer) en un microscopi invertit a 10x de manera setmanal. S’afegeixen 20 µl de mostra que penetren per capilaritat. Donat que la Dunaliella salina és una microalga mòbil, cal diluir les mostres prèviament amb lugol al 1% en proporció 1:10 (9 parts de lugol per 1 de mostra), per a fixar-les a la preparació i poder procedir amb el seu comptatge. La càmera es coloca al microscopi i es procedeix a comptar a 10x tots els quadrants per a saber el número de cèl·lules presents en cada ml de cultiu. Per calcular el nombre de cèl·lules s'utilitza la següent equació:
nº cèl·lules / ml = (total cèl·lules / nº quadrants) x 10^4 x factor de dilució
El creixement d’un cultiu de microalgues s’expressa com l’increment de biomassa, ja sigui mitjançant el comptatge del nombre de cèl·lules o segons els canvis en la densitat òptica.
Extracció
L'extracció de proteïnes es du a terme a través de diferents processos quan s'assoleix la fase estacionaria del cultiu. El creixement cel·lular en un cultiu ocórre en quatre fases [4][6]:
-
Fase de latència: les cèl·lules s'estan ajustant a les condicions del cultiu i no es divideixen.
-
Fase exponencial o de creixement logarítmic (log): les cèl·lules es divideixen activament i és la millor etapa per avaluar el creixement de la població. Al final d'aquesta fase és el millor moment per a realitzar traspassos cel·lulars o subcultius.
-
Fase estacionaria: el creixement del cultiu es va relentitzant a mida que les cèl·lules van acumulant residus cel·lulars (metabolits secundaris) i s'esgoten els nutrients.
-
Fase de mort o descens: la població de cèl·lules vives disminueix a mida que la població va morint.
Es monitoritza el creixement per comptatge cel·lular i quan pràcticament no hi ha creixement i pràcticament la població d'algues comença a disminuir (fase estacionaria), es recol·lecten les cèl·lules. Els processos duts a terme són els següents:
-
Obtenció d'extractes per centrifugació
-
Trencament de membrana plasmàtica per sonicació i congelació
-
Precipitació de proteïnes amb acetona
Processos de separació i quantificació de proteïnes
Les proteïnes solubles es poden determinar pel mètode de Bradford. Aquest consisteix en l’elaboració d’una recta patró amb albúmina bovina (10 mg/ml) i la posterior lectura a 590 nm mitjançant un espectrofotòmetre [7].
La separació de les diferents proteïnes i pèptids per pes molecular es realitza mitjançant una electroforesi en gel de poliacrilamida (SDS-PAGE) [8].
Plantes superiors
Matèries primeres
S'utilitzen matèries primeres del proveïdor Gran Velada (flor d'àrnica, lot 210012) i .Hierbalia (flor de calèndula, lot A221983).
Mètode d’extracció
S'obtenen hidrolats d’àrnica i calèndula per separat mitjançant una extracció amb Soxhlet. El solvent d’extracció utilitzat és aigua destil·lada per a incorporar la mescla directament a la fase aquosa de les fórmules farmacèutiques. També es prova d'extreure les substàncies actives de les plantes mitjançant una solució hidroalcohòlica d'etanol i aigua (50:50) amb l'ajut d'un bany d'ultrasons.
Procediment
Primerament, es pesa una quantitat coneguda d’herbes i es moltura mitjançant un molinet de cafè. A continuació, es fabrica un petit sobre amb paper de filtre de mida inferior al cos del Soxhlet. Es pesen les herbes necessàries per diferència fins a omplir els sobres (6 g d'àrnica i 9 g de calèndula) i es procedeix a fer el muntatge de l’aparell.
El vapor d’aigua es va condensant i acumulant al sifó fins a caure altre cop al matràs i iniciar així un nou cicle d’extracció. Les extraccions es duen a terme durant 2 hores, realitzant-se 1 cicle d’extracció per la calèndula i 4 per l’àrnica.
Tub refrigerant
Cos extractor
Mostra a extreure
Matràs
Manta calefactora